Dienstleistungen

Professionelle und kostensparende Lösungen

Enzymexpression und -produktion

Creative Enzymes bietet durchgängige Dienstleistungen zur Enzymexpression und -produktion für natürliche und rekombinante Enzyme in bakteriellen, Hefe-, Pilz-, Insekten-, Säugerzell-, transgenen Tier-, Pflanzen- sowie zellfreien Systemen. Mit jahrzehntelanger Expertise in molekularem Klonieren, Host-Stamm-Engineering und großskaliger Fermentation unterstützen wir Projekte von cDNA-Design und Vektorkonstruktion bis hin zur Enzymproduktion im Pilot- und Produktionsmaßstab. Da die globale Nachfrage nach therapeutischen Enzymen und industriellen Biokatalysatoren weiter wächst, stellen unsere integrierten Plattformen optimale Enzymausbeute, Funktionalität und Skalierbarkeit sicher. Ob für die pharmazeutische Entwicklung, Diagnostik oder industrielle Katalyse – wir liefern zuverlässige, kosteneffiziente und maßgeschneiderte Enzymproduktionslösungen, abgestimmt auf Ihre Anwendung.

Hintergrund: Wissenschaftliche Grundlagen der rekombinanten Enzymexpression und industriellen Enzymproduktion

Enzyme übernehmen unverzichtbare Funktionen in nahezu allen biologischen Signal- und Stoffwechselwegen. Fortschritte in der Enzymologie und Molekularbiologie haben die Identifizierung und Entwicklung von Enzymen für therapeutische, diagnostische, landwirtschaftliche und industrielle Anwendungen ermöglicht. Bis heute wurden von Zulassungsbehörden mehr als 200 proteinbasierte Therapeutika zugelassen, und der globale Markt für therapeutische und industrielle Enzyme hat ein Volumen von mehreren Milliarden US-Dollar erreicht. Kontinuierliche Innovationen in Enzymengineering und Bioprozess-Technologien erhöhen den Bedarf an robusten, skalierbaren und effizienten Expressionsplattformen.

Die Herstellung eines rekombinanten Enzyms umfasst typischerweise mehrere Schlüsselschritte:

  1. cDNA-Gewinnung: durch mRNA-Isolierung und Reverse Transkription oder durch direkte Gensynthese.
  2. DNA-Amplifikation und Klonierung: traditionell mittels Restriktionsverdau und Ligation, heute deutlich verbessert durch PCR-, RT-PCR- und qPCR-Technologien.
  3. Vektorkonstruktion: Einbringen der kodierenden Sequenz in einen geeigneten Expressionsvektor.
  4. Transformation/Transfektion und Expressionsinduktion: in einem geeigneten Host-System.
  5. Fermentation, Aufreinigung und Scale-up: zur Herstellung ausreichender Mengen aktiven Enzyms.

Key steps of recombinant enzyme productionAbbildung 1. Schema einer vereinfachten cDNA-Klonierung und Expression.

PCR-Technologien haben die Klonierungseffizienz revolutioniert und Zeit- sowie Kostenaufwand erheblich reduziert. Nach der Klonierung ist die Auswahl des richtigen Expressionsvektors und Hosts entscheidend. Faktoren wie Plasmidstabilität, Replikationsursprung, Promotorstärke, Fusions-Tags und Fermentationskompatibilität beeinflussen die Expressionseffizienz und Skalierbarkeit unmittelbar.

Die Wahl des geeigneten Host-Systems ist ebenso wichtig. Nicht-glykosylierte Enzyme werden häufig in bakteriellen oder Hefesystemen produziert, während glykosylierte therapeutische Enzyme typischerweise Säugerzellen oder gentechnisch optimierte eukaryotische Hosts erfordern. Niedere Organismen ermöglichen in der Regel eine kosteneffiziente Produktion bei hoher Zelldichte, während höhere eukaryotische Systeme komplexere posttranslationale Modifikationen erlauben.

Advantages of typical hosts for enzyme expression: bacteria, yeasts, insect, and mammalAbbildung 2. Vorteile typischer Hosts für die Enzymexpression.

Creative Enzymes integriert Molekularbiologie, Host-Engineering und Bioprozess-Optimierung, um maßgeschneiderte Lösungen zur Enzymexpression in allen relevanten Systemen bereitzustellen.

Unser Angebot: Integrierte Enzymexpressionsplattformen über alle Host-Systeme hinweg

Wir bieten kundenspezifische Dienstleistungen, die das gesamte Spektrum der Enzymexpressionstechnologien abdecken:

Bewertung und Optimierung der Enzymexpression

  • Vorläufige Expressionsversuche im Kleinstmaßstab
  • Codon-Optimierung und Gensynthese
  • Promotor- und Vektor-Screening
  • Design von Fusions-Tags (His-Tag, GST, MBP etc.)
  • Strategien zur Erhöhung der Löslichkeit
  • Autoinduktions-Fermentationssysteme

Dienstleistungen zur Enzymexpression und -produktion in Pilzsystemen

  • Plattformen mit filamentösen Pilzen
  • Hochgradige extrazelluläre Enzymsekretion
  • Herstellungssysteme für industrielle Enzyme

Baculovirus–Insektenzell-Enzymexpressionssystem

  • Baculovirus-vermittelte Expression
  • Sf9-, Sf21- und High-Five-Zellen
  • Produktion komplexer Enzyme und Glykoproteine

Säugerzellbasierte Dienstleistungen zur Enzymexpression

  • CHO-Zellsysteme
  • HEK293-Expressionsplattformen
  • Entwicklung stabiler Zelllinien
  • Produktion therapeutischer Enzyme mit humanähnlicher Glykosylierung

Enzymexpression in transgenen Tieren

  • Erzeugung transgener Nutztiere
  • Enzymproduktion auf Milch- oder Serum-Basis
  • Langfristig stabile Expressionsmodelle

Transgene pflanzenbasierte Enzymexpressionssysteme

  • Stabile Pflanzentransformation
  • Samenbasierte Expressionssysteme
  • Landwirtschaftliche Enzymproduktion im Großmaßstab

Zellfreie Enzymexpression (In-vitro-Systeme)

  • Schnelle in vitro-Transkriptions-Translationssysteme
  • High-Throughput-Screening
  • Expression toxischer oder instabiler Enzyme

Dienstleistungen zur Entwicklung von Zelllinien und Host-Stämmen

  • Host-Stamm-Engineering
  • Genom-Editierung
  • Optimierung metabolischer Signalwege
  • Systeme zur stabilen Integration

Scale-up der Enzymproduktion und Unterstützung der Herstellung

  • Fermentation im Pilotmaßstab
  • Prozessentwicklung und -optimierung
  • Unterstützung beim Technologietransfer
  • Unterstützung bei der regulatorisch konformen Produktion

Anfrage

Strategie zur Host-Auswahl

  • Bakterielle Systeme: Ideal für schnelles Wachstum, geringe Kosten und hohe Ausbeuten. Einschränkungen sind jedoch u. a. die Bildung von Einschlusskörpern, fehlerhafte Faltung oder das Fehlen posttranslationaler Modifikationen.
  • Hefesysteme: Bieten eukaryotische Faltungsmaschinerie und Sekretionsmöglichkeiten. Geeignet für die industrielle Enzymproduktion und moderate Anforderungen an die Glykosylierung.
  • Pilzsysteme: Hoch effiziente extrazelluläre Enzymsekretion. Häufig eingesetzt für industrielle Enzyme wie Hydrolasen.
  • Insektenzell-Systeme: Ermöglichen komplexe Faltung und moderate Glykosylierung. Geeignet für Enzyme mit mehreren Untereinheiten.
  • Säugersysteme: Unverzichtbar für therapeutische Enzyme, die eine humanähnliche Glykosylierung erfordern. Höhere Kosten, jedoch überlegene biologische Relevanz.
  • Transgene Pflanzen und Tiere: Ermöglichen großskalige, langfristige Produktion. Besonders nützlich für kostensensitive Bulk-Enzyme.
  • Zellfreie Systeme: Schnelle Expression toxischer oder instabiler Enzyme. Ideal für High-Throughput-Enzymscreening.

Unsere Wissenschaftlerinnen und Wissenschaftler bewerten sorgfältig Proteinqualität, Faltung, Glykosylierung, Geschwindigkeit, Ausbeute und Kosten, um die optimale Strategie festzulegen.

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Warum Creative Enzymes für kundenspezifische Enzymexpression und -produktion

Umfassende Multi-Plattform-Expertise

Abdeckung aller wesentlichen prokaryotischen und eukaryotischen Expressionssysteme.

Jahrzehntelange Erfahrung in Klonierung und Fermentation

Nachweisliche Erfolgsbilanz bei komplexen Projekten zur Enzymexpression.

Maßgeschneiderte Lösungen für anspruchsvolle Enzyme

Spezialisierte Strategien für membrangebundene, toxische, instabile oder aggregationsanfällige Enzyme.

Skalierbare Herstellungskapazitäten

Von Milligramm-Forschungsmengen bis zur Produktion im industriellen Maßstab.

Integrierte Dienstleistungen im Host-Engineering

Genom-Editierung und Stammoptimierung zur Steigerung der Produktivität.

Professionelles Projektmanagement und Vertraulichkeit

Engagierte wissenschaftliche Unterstützung und strikter Schutz geistigen Eigentums.

Fallstudien: Repräsentative Projekte zur Enzymexpression und -produktion

Fall 1: Hochgradige Expression und Charakterisierung einer thermostabilen PETase

Zur biokatalytischen Reduktion von PET-Kunststoffabfällen wurde ein PET-hydrolysierendes Enzym (BhrPETase) aus dem Bakterium HR29 sekretorisch in Bacillus subtilis exprimiert. Unter Verwendung eines gentechnisch optimierten Stamms mit Chaperon-Überexpression erreichte die Produktion 0,66 g/L und zeigte damit eine effiziente Enzymexpression und -sekretion. Die gereinigte BhrPETase wies im Vergleich zu LCC und IsPETase, die unter identischen Bedingungen exprimiert wurden, eine überlegene hydrolytische Aktivität gegenüber amorphem PET auf. Bemerkenswert ist zudem eine außergewöhnliche Schmelztemperatur von 101 °C, womit es sich um die bislang thermostabilste berichtete bakterielle PETase handelt. Die hohe Expressionsausbeute, starke katalytische Leistung und extreme Thermostabilität unterstreichen das Potenzial für die industrielle PET-Biodegradation und nachhaltige Kunststoffrecycling-Anwendungen im Großmaßstab.

Secretory expression in Bacillus subtilis and biochemical characterization of a highly thermostable polyethylene terephthalate hydrolase from bacterium HR29Abbildung 3. Expression von BhrPETase, IsPETase und LCC in CBS2 und CBS2ΔhrcA. (Xi et al., 2021)

Fall 2: Rekombinante Produktion der alkalischen Subtilisin SAPN

Das sapN-Gen, das für die extrazelluläre alkalische Serinprotease SAPN aus Melghiribacillus thermohalophilus kodiert, wurde kloniert und heterolog in Escherichia coli und Pichia pastoris exprimiert. Es wurden mehrere Expressionskonstrukte – einschließlich Pre-Pro-, Pro- und reifer Formen – evaluiert. Rekombinante Enzyme wurden aufgereinigt und mit der Wildtyp-Protease verglichen. Die Sequenzanalyse zeigte eine 96%ige Identität mit der Protease MP1 aus Bacillus licheniformis. His6-getaggte Varianten zeigten eine überlegene Aktivität, Thermostabilität und Alkalitoleranz sowie eine verbesserte Hydrolyse von Nebenprodukten aus Meeresfrüchten. Insbesondere wies SAPN, das in P. pastoris exprimiert wurde, eine höhere Aktivität auf als das in E. coli produzierte Enzym. Strukturmodellierungen unterstützten zudem die Struktur-Funktions-Analyse und lieferten eine Grundlage für das Engineering verbesserter industrieller Proteasen.

Bacterial and yeast expression of a serine alkaline proteaseAbbildung 4. Klonierung und heterologe Expression von Subtilisin SAPN, einer alkalischen Serinprotease aus Melghiribacillus thermohalophilus Nari2AT, in Escherichia coli und Pichia pastoris. (Mechri et al., 2021)

Häufig gestellte Fragen (FAQs): Enzymexpression und -produktion

  • F: Welches Expressionssystem ist für mein Enzym am besten geeignet?

    A: Das optimale System hängt von Enzymgröße, Struktur, Glykosylierungsanforderungen, Löslichkeit und der Endanwendung ab. Für nicht-glykosylierte Enzyme empfehlen wir aufgrund von Kosteneffizienz und Geschwindigkeit typischerweise zunächst ein bakterielles System. Für therapeutische Enzyme, die komplexe Modifikationen erfordern, können Säugersysteme notwendig sein.
  • F: Wie lange dauert ein Enzymexpressionsprojekt?

    A: Die Zeitpläne variieren je nach Komplexität. Bakterielle Expressionsprojekte können mehrere Wochen dauern, während die Entwicklung stabiler Säugerzelllinien mehrere Monate in Anspruch nehmen kann.
  • F: Können Sie bei Enzymen helfen, die Einschlusskörper bilden?

    A: Ja. Wir setzen Strategien wie Temperatur-Optimierung, Fusions-Tags, Co-Expression von Chaperonen, Refolding-Protokolle oder den Wechsel auf alternative Hosts ein.
  • F: Unterstützen Sie Scale-up über die Laborproduktion hinaus?

    A: Ja. Wir bieten Fermentation im Pilotmaßstab und Unterstützung der Herstellung, einschließlich Prozessoptimierung und Technologietransfer.
  • F: Was ist, wenn mein Enzym für Host-Zellen toxisch ist?

    A: Wir bieten induzierbare Expressionssysteme, streng regulierte Promotoren, sekretionsbasierte Strategien sowie zellfreie Expressionsplattformen.
  • F: Bieten Sie Aufreinigung und Aktivitätstests an?

    A: Ja. Wir bieten umfassende Downstream-Prozesse, einschließlich Affinitätsaufreinigung, Chromatographie und Charakterisierung der Enzymaktivität.
  • F: Können Sie Host-Stämme zur Verbesserung der Produktivität gentechnisch optimieren?

    A: Ja. Unsere Dienstleistungen zur Host-Stammentwicklung umfassen Genom-Editierung, metabolische Optimierung und Systeme zur stabilen Integration.

Literatur:

  1. Mechri S, Zaraï Jaouadi N, Bouacem K, et al. Cloning and heterologous expression of subtilisin SAPN, a serine alkaline protease from Melghiribacillus thermohalophilus Nari2AT in Escherichia coli and Pichia pastoris. Process Biochemistry. 2021;105:27-41. doi:10.1016/j.procbio.2021.03.020
  2. Xi X, Ni K, Hao H, Shang Y, Zhao B, Qian Z. Secretory expression in Bacillus subtilis and biochemical characterization of a highly thermostable polyethylene terephthalate hydrolase from bacterium HR29. Enzyme and Microbial Technology. 2021;143:109715. doi:10.1016/j.enzmictec.2020.109715

Nur für Forschungs- und Industriezwecke. Nicht für den persönlichen Gebrauch bestimmt. Bestimmte Produkte in Lebensmittelqualität eignen sich für die Formulierungsentwicklung in Lebensmitteln und verwandten Anwendungen.

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