Dienstleistungen

Professionelle und kostensparende Lösungen

Genom-Engineering zur Optimierung biokatalytischer Stoffwechselwege

Genome Engineering ermöglicht die systematische und umfassende Modifikation zellulärer Systeme, um die biokatalytische Leistungsfähigkeit über die Grenzen einer rein zielgerichteten Pathway-Manipulation hinaus zu steigern. Durch die Einführung multiplexer, genomweiter Perturbationen formt Genome Engineering das gesamte zelluläre Milieu so um, dass Produktbildung, Robustheit und industrielle Eignung begünstigt werden. Bei Creative Enzymes integriert unser Genome-Engineering-Service fortschrittliche kombinatorische Gentechnologien, den Hochdurchsatz-Aufbau von Bibliotheken sowie leistungsfähige Screening-Strategien, um optimale Genotypen für kundenspezifische biokatalytische Anwendungen zu identifizieren. Unter Nutzung von Tools wie MAGE, gTME, TRMR und CRISPR-basiertem Multiplex-Editing unterstützen wir die Optimierung der Pathway-Expression, die Verbesserung der Toleranz sowie die Phänotyp-Entdeckung in diversen Wirtsorganismen und beschleunigen damit die Stammentwicklung für die industrielle Biokatalyse.

Hintergrund: Genome Engineering als globale Strategie in der biokatalytischen Entwicklung

Genome Engineering gestaltet die gesamte zelluläre Landschaft um, anstatt einzelne Gene oder Pathways zu adressieren. Durch die Einführung multiplexer, genomweiter Modifikationen können komplexe Phänotypen aus kombinatorischer genetischer Variation hervorgehen.

Biologische Systeme sind hochgradig vernetzt; Stoffwechselwege, Regulation, Stressantworten und Ressourcenallokation sind eng gekoppelt. Die Modifikation einzelner Gene kann unvorhersehbare Effekte haben, wodurch eine Ganzgenom-Exploration für eine optimale Biokatalysator-Performance essenziell wird.

In der industriellen Anwendung adressiert Genome Engineering Herausforderungen, die durch rationales Design allein nicht lösbar sind: Verbesserung der Toleranz gegenüber toxischen Verbindungen, Erhöhung der Pathway-Robustheit, Ausbalancierung der globalen Genexpression sowie Aufdeckung vorteilhafter, nicht offensichtlicher genetischer Interaktionen.

Von zielgerichtetem Editing zu multiplexer, genomweiter Perturbation

Traditionelles Metabolic Engineering basiert auf Single-Gene-Knockouts oder Überexpression, was häufig durch unvollständiges Wissen und unvorhersehbare Ergebnisse limitiert ist.

Genome Engineering erweitert dies durch die Möglichkeit:

  • Gleichzeitige Modifikation mehrerer Gene
  • Exploration großer Genotyp-Phänotyp-Räume
  • Entdeckungsgetriebene Optimierung ohne vollständiges mechanistisches Verständnis

Dieser kombinatorische Ansatz ergänzt Pathway Engineering und Flux-Analysen und ist ein zentraler Bestandteil moderner biokatalytischer Entwicklung.

Genome-Engineering-Technologien: Tools und Ansätze

Hochdurchsatz-Genome-Engineering ermöglicht heute die schnelle Konstruktion und das Screening großer Stammbibliotheken. Zu den wichtigsten Ansätzen zählen:

Zielgerichtetes Multiplex-Editing

Techniken wie MAGE und synthetische sRNAs ermöglichen präzise, gleichzeitige Modifikationen von Dutzenden vorab ausgewählter Gene. Sie sind ideal, wenn Kandidaten-Targets bekannt sind, und bieten hohe Spezifität und Steuerbarkeit.

  • MAGE: iterative Genommodifikationen über multiple Loci
  • sRNAs: einstellbare Genrepression ohne permanente Edits

Randomisierte, genomweite Perturbation

Strategien wie gTME, TRMR und SCALEs erzeugen Bibliotheken mit randomisierten, genomweiten Mutationen, gefolgt von Selektion auf überlegene Phänotypen. Diese sind effektiv, wenn relevante Targets unbekannt sind oder komplexe Merkmale mehrere Loci betreffen.

  • gTME: Modifikationen von Transkriptionsfaktoren zur Reprogrammierung der Genexpression
  • TRMR: barcodierte, genomweite Perturbationen
  • SCALEs: großskalige Genomrestrukturierung und Evaluierung

CRISPR-basiertes Multiplex Engineering

CRISPR-Cas-Systeme ermöglichen simultanes Editing, programmierbare Genaktivierung/-repression (CRISPRi/CRISPRa) sowie kombinatorische Netzwerk-Perturbation und sind damit zentral für Genome Engineering der nächsten Generation in der Biokatalyse.

Genome engineering technologies: transcription factor modifications to reprogram gene expression, barcoded genome-wide perturbations,  large-scale genome restructuring and evaluation, and CRISPRAbbildung 1. Gängige Tools für Genome Engineering. (A) gTME; (B) TRMR; (C) MAGE; (D) CRISPR.

Was wir anbieten: Integrierte Genome-Engineering-Services

Unser Genome-Engineering-Service basiert auf kombinatorischen Strategien zur globalen Genomoptimierung, zugeschnitten auf kundenspezifische Ziele der Pathway-Expression und industriellen Performance. Wir unterstützen Projekte von explorativer Phänotyp-Entdeckung bis hin zur fokussierten Optimierung fortgeschrittener Produktionsstämme.

Kernleistungen

Kombinatorische Bibliothekskonstruktion

Design und Generierung großer, diverser, genome-engineerter Stammbibliotheken mittels zielgerichteter oder randomisierter Ansätze.

Biosensor-Design zur chemischen Messung

Entwicklung genetischer oder enzymatischer Biosensoren zur Echtzeit- und Hochdurchsatz-Detektion von Metaboliten, Cofaktoren oder Pathway-Intermediaten.

Hochdurchsatz-Screening und Selektion

Implementierung von Screening-Plattformen auf Basis von Flüssigchromatographie, Massenspektrometrie, fluoreszenzaktivierter Zellsortierung (FACS) oder wachstumsbasierter Selektion.

Auswahl und Integration von Genome-Engineering-Tools

Strategische Auswahl und Kombination von Genome-Engineering-Tools passend zu Projektzielen und Eigenschaften des Wirtsorganismus.

Diese Leistungen können einzeln erbracht oder in einen umfassenden Genome-Engineering-Workflow integriert werden.

Anfrage

Service-Details: Erweiterte Kompetenzen im Genome Engineering

  • Großskalige kombinatorische Diversität: Wir können genome-engineerte Bibliotheken mit Tausenden bis Millionen Varianten erzeugen und damit eine tiefgehende Exploration des genetischen Raums ermöglichen.
  • Integration mit Pathway Engineering und MFA: Genome-Engineering-Aktivitäten sind eng mit Pathway Engineering und metabolischer Flussanalyse (MFA) verzahnt, um Kohärenz über verschiedene Optimierungsebenen hinweg sicherzustellen.
  • Flexible Screening-Modalitäten: Unsere Screening-Plattformen umfassen sowohl analytische (LC-MS, GC-MS) als auch biologische (Biosensoren, Wachstumsselektion) Methoden und bieten damit Flexibilität für unterschiedliche Produktklassen.
  • Anwendbarkeit über verschiedene Wirtsysteme: Unsere Genome-Engineering-Services unterstützen ein breites Spektrum mikrobieller und eukaryotischer Wirte, die in der industriellen Biokatalyse gängig sind.

Service-Workflow

Service workflow of genome engineering for biocatalytic pathway optimization

Kontaktieren Sie unser Team

Warum wir

Globale Optimierungsperspektive

Wir entwickeln das gesamte zelluläre System und nicht isolierte genetische Elemente.

Expertise in mehreren Genome-Engineering-Plattformen

Unser Team beherrscht sowohl zielgerichtete als auch randomisierte Genome-Engineering-Ansätze.

Hochdurchsatz- und skalierbare Umsetzung

Bibliothekskonstruktion und Screening-Workflows sind auf industrielle Skalierung und Relevanz ausgelegt.

Kundenspezifisches Biosensor- und Screening-Design

Screening-Strategien werden auf jedes Produkt und jeden Pathway zugeschnitten.

Starke Integration mit Computational und Systems Biology

Genome Engineering wird durch datengetriebene Erkenntnisse und systemische Analysen gesteuert.

Industrieorientierte Stammentwicklung

Alle Aktivitäten priorisieren Robustheit, Skalierbarkeit und Herstellbarkeit.

Fallstudien: Genome Engineering in der industriellen Biokatalyse

Fall 1: Verbesserte Ethanolproduktion durch Optimierung metabolischer Pathways

Die Optimierung metabolischer Pathways ist entscheidend, um Ausbeuten bei der Umwandlung von Lignocellulose zu Ethanol zu erhöhen. In dieser Studie wurden Gene aus Zymomonas mobilis, die für Alkoholdehydrogenase II (ADH II) und Pyruvatdecarboxylase (PDC) kodieren, in Escherichia coli exprimiert, wodurch der Glukosestoffwechsel verbessert und die Ethanolproduktion aus 10% Glukose auf über 30 g/L gesteigert wurde. Um den Pyruvatfluss weiter umzulenken und Nebenprodukte wie Ameisensäure zu reduzieren, wurden Red-vermittelte Knockouts der Pyruvat-Formiat-Lyase-Gene (pflA und pflB) durchgeführt. Unter mikroaeroben Bedingungen produzierten diese Mutanten 163% bzw. 207% mehr Ethanol als der Elternstamm. Diese Arbeit zeigt, dass heterologe Genexpression in Kombination mit gezielter metabolischer Umlenkung die Biokonversionseffizienz signifikant verbessern kann.

Optimization of metabolic pathways for bioconversion of lignocellulose to ethanol through genetic engineeringAbbildung 2. Gaschromatographie-Profile von Brühenproben aus Kulturen von pflA- und pflB-Mutanten sowie dem Elternstamm am Ende der Fermentation mit 5% Glukose nach 72 h unter mikroaeroben Bedingungen. ETH = Ethanol, 1-P = 1-Propylalkohol. A: pflA-Mutanten; B: pflB-Mutanten; C: Kontrollstamm. (Chen et al., 2009)

Fall 2: Plasmidfreie biokatalytische Produktion von MPCA in E. coli

Es wurde ein Ganzzell-Biokatalyseprozess zur effizienten Synthese von 5-Methylpyrazin-2-carbonsäure (MPCA) aus 2,5-Dimethylpyrazin (DMP) unter Verwendung von gentechnisch modifiziertem E. coli BL21 (DE3) entwickelt. Die plasmidbasierte Expression von Xylol-Monooxygenase (XMO), Benzylalkohol-Dehydrogenase und Benzaldehyd-Dehydrogenase ergab initial 5,0 g/L MPCA; nach RBS-Optimierung der XMO-Untereinheiten stieg der Titer auf 10,2 g/L. Zur Eliminierung von Plasmiden und zur Erhöhung der Stabilität wurde CRISPR/Cas9 eingesetzt, um diese Gene in das Genom zu integrieren und die Untereinheitenverhältnisse feinzujustieren. Der finale Stamm erreichte 15,6 g/L MPCA bei einer Ausbeute von 1,0 mol/mol aus DMP und stellt damit eine umweltfreundliche Hoch-Ausbeute-Plattform dar, die für die industrielle MPCA-Produktion geeignet ist.

High-yield and plasmid-free biocatalytic production of 5-methylpyrazine-2-carboxylic acid by combinatorial genetic elements engineering and genome engineering of Escherichia coliAbbildung 3. Einfluss von Zellkonzentration, pH, Temperatur und Substratkonzentration auf den MPCA-Titer. (A) Schematische Darstellung der Ganzzellkatalyse. (B) Effekte der Biokatalysator-Konzentration auf den MPCA-Titer. (C) Einfluss des pH auf den MPCA-Titer. (D) Einfluss der Temperatur auf den MPCA-Titer. (E) Einfluss der Substratkonzentration auf den MPCA-Titer. (F) MPCA-Titer bei 44,4 g/L DCW über die Zeit. Der jeweils höchste Wert je optimierter Bedingung (grüner Balken). (Gu et al., 2020)

FAQs: Häufig gestellte Fragen zu Genome Engineering

  • F: Worin unterscheidet sich Genome Engineering von Pathway Engineering?

    A: Während Pathway Engineering spezifische biosynthetische Routen adressiert, führt Genome Engineering globale Modifikationen über das gesamte Genom hinweg ein, um den gesamten zellulären Kontext zu optimieren und Verbesserungen in Wachstum, Metabolismus und Stresstoleranz zu ermöglichen.
  • F: Wann sollte Genome Engineering eingesetzt werden?

    A: Genome Engineering ist besonders wertvoll, wenn pathwyspezifische Modifikationen ihre Leistungsgrenzen erreichen oder wenn komplexe Phänotypen erforderlich sind – etwa Toleranz gegenüber multiplen Stressoren, Cofaktor-Balancierung oder eine globale Umverteilung von Flüssen.
  • F: Ist Genome Engineering rein zufallsbasiert?

    A: Nein. Die Methoden reichen von hochgradig zielgerichteten Ansätzen wie CRISPR-vermittelten Multiplex-Edits bis hin zu entdeckungsgetriebenen randomisierten Strategien. Häufig werden beide Ansätze kombiniert, um Effizienz und Diversität zu maximieren.
  • F: Wie werden vorteilhafte Stämme aus großen Bibliotheken identifiziert?

    A: Stämme werden mittels Hochdurchsatz-Methoden, analytischen Assays oder Biosensoren gescreent bzw. selektiert, die die gewünschten Phänotypen überwachen, sodass Top-Performer aus Tausenden Varianten schnell identifiziert werden können.
  • F: Kann Genome Engineering mit CRISPR-Tools kombiniert werden?

    A: Ja. CRISPR-Cas-Systeme werden breit für präzise, multiplexe Genom-Edits eingesetzt, beschleunigen die Stammentwicklung und ermöglichen eine fein abgestimmte Kontrolle metabolischer Pathways.
  • F: Unterstützen Sie das Downstream-Scale-up?

    A: Selbstverständlich. Entwickelte Stämme werden hinsichtlich Robustheit, Produktivität und industrieller Eignung validiert, um eine nahtlose Integration in großskalige Bioprozesse sicherzustellen.

Literatur:

  1. Chen J, Zhang W, Tan L, Wang Y, He G. Optimization of metabolic pathways for bioconversion of lignocellulose to ethanol through genetic engineering. Biotechnology Advances. 2009;27(5):593-598. doi:10.1016/j.biotechadv.2009.04.021
  2. Gu L, Yuan H, Lv X, et al. High-yield and plasmid-free biocatalytic production of 5-methylpyrazine-2-carboxylic acid by combinatorial genetic elements engineering and genome engineering of Escherichia coli. Enzyme and Microbial Technology. 2020;134:109488. doi:10.1016/j.enzmictec.2019.109488

Nur für Forschungs- und Industriezwecke. Nicht für den persönlichen Gebrauch bestimmt. Bestimmte Produkte in Lebensmittelqualität eignen sich für die Formulierungsentwicklung in Lebensmitteln und verwandten Anwendungen.

Dienstleistungen
Online-Anfrage

Nur für Forschungs- und Industriezwecke. Nicht für den persönlichen Gebrauch bestimmt. Bestimmte Produkte in Lebensmittelqualität eignen sich für die Formulierungsentwicklung in Lebensmitteln und verwandten Anwendungen.