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Strukturelle und mechanistische Analyse von Varianten der zufälligen Mutagenese

Die Entschlüsselung der molekularen Grundlagen verbesserter oder veränderter Enzymfunktionen ist entscheidend für eine intelligente Enzymtechnik. Die Strukturelle und mechanistische Analyse von Varianten der zufälligen Mutagenese Dienst bei Kreative Enzyme bietet eine umfassende Suite von experimentellen und computergestützten Werkzeugen, um zu entschlüsseln, wie Mutationen in strukturelle Veränderungen und funktionale Ergebnisse übersetzt werden.

Durch die Kombination von biophysikalischer Charakterisierung, struktureller Biologie, molekularer Modellierung und kinetischer Analyse enthüllen wir die strukturellen Determinanten und mechanistischen Grundlagen der Enzym-Evolution. Diese integrierte Analyse validiert nicht nur die Ergebnisse der zufälligen Mutagenese und DNA-Shuffling, sondern leitet auch die nächste Runde der rationalen Verbesserung ein.

Unser Ansatz verwandelt mutierte Sequenzdaten in umsetzbare biochemische Erkenntnisse – er zeigt auf, wie atomare Störungen in der Enzymstruktur die katalytische Effizienz, Substratspezifität und Stabilität beeinflussen. Durch diesen Service ermöglicht Creative Enzymes seinen Kunden, von empirischem Erfolg zu mechanistischem Verständnis überzugehen und sicherzustellen, dass die entwickelten Enzyme nicht nur effektiv, sondern auch wissenschaftlich erklärt sind.

Einführung in die strukturelle und mechanistische Analyse

Zufällige Mutagenese und DNA-Shuffling generiere eine große Sequenzvielfalt und entdecke Mutanten mit überlegenen oder neuartigen katalytischen Funktionen. Während das Hochdurchsatz-Screening jedoch vorteilhafte Varianten identifiziert, bleibt oft eine entscheidende Frage unbeantwortet: warum Funktionieren diese Mutationen?

Das Verständnis des Struktur-Funktions-Beziehung Die Untersuchung von Enzymvarianten ist grundlegend für die Verfeinerung von Proteinengineering-Strategien. Strukturelle und mechanistische Studien liefern die molekulare Grundlage für verbesserte Eigenschaften, enthüllen versteckte Kompromisse und zeigen potenzielle allosterische oder dynamische Effekte auf, die durch Mutationen eingeführt werden.

Wichtige Erkenntnisse ergeben sich aus:

  • Strukturanalyse: offenbart, wie Aminosäureaustausche das Falten, die Sekundärstruktur oder die Geometrie des aktiven Zentrums verändern.
  • Mechanistische Studien: Untersuchung des katalytischen Weges, der Reaktionszwischenprodukte und der energetischen Profile der Enzymumsätze.

Bei Creative Enzymes integrieren wir experimentelle und computergestützte Strategien – von der Kristallographie und der zirkulären Dichroismus bis hin zu molekularer Dynamik und kinetischer Isotopenanalyse –, um ein vollständiges Bild der Enzym-Evolution zu zeichnen. Das Ergebnis ist eine mechanistische Erzählung, die Sequenzänderungen mit strukturellen Umstellungen und letztlich mit der funktionalen Leistung verbindet.

Strukturelle und mechanistische Analyse: Dienstleistungen und Kapazitäten

Unsere Plattform für strukturelle Analysen und mechanistische Studien umfasst sowohl empirische als auch in silico Ansätze zur Aufklärung der Enzymarchitektur und des katalytischen Mechanismus. Kunden können einzelne Module auswählen oder diese zu einem vollständigen mechanistischen Untersuchungsprozess kombinieren.

Strukturelle Charakterisierung

  • Proteinreinigung und Qualitätsbewertung: Hochreine Mutantenenzyme werden unter Verwendung optimierter Expressionssysteme hergestellt, um eine Homogenität zu gewährleisten, die für strukturelle Studien geeignet ist.
  • Analyse der sekundären und tertiären Struktur: Zirkuläre Dichroismus (CD) und Fluoreszenzspektroskopie ermöglichen eine schnelle Bewertung der Faltung und konformationalen Integrität.
  • Röntgenkristallographie und Kryo-EM: Bestimmung von 3D-Strukturen mit atomarer Auflösung zur Visualisierung aktiver Stellen, Ligandeninteraktionen und mutationsbedingter konformationeller Verschiebungen.
  • Kleinwinkel-Röntgenstreuung (SAXS): Analyse der konformationellen Flexibilität im Lösungszustand und der oligomeren Organisation.
  • Thermische und chemische Stabilitätstests: Die Differential Scanning Calorimetrie (DSC) und Thermofluor-Assays quantifizieren Stabilitätsänderungen, die durch Mutationen eingeführt werden.

Mechanistische Untersuchungen

  • Steady-State- und Pre-Steady-State-Kinetik: Bestimmung der kinetischen ParameterKM, kKatze, KIch) und transiente Zwischenprodukte, um katalytische Schritte zu kartieren.
  • Isotopenmarkierung und kinetische Isotopeffekte: Aufklärung der geschwindigkeitsbestimmenden Schritte und Übergangszustandsstrukturen.
  • Spektroskopische Untersuchung aktiver Stellen: Einsatz von UV-Vis-, Fluoreszenz- und EPR/NMR-Spektroskopie zur Detektion von Cofaktoren, Radikalen oder katalytischen Intermediaten.
  • Reaktionsweg-Analyse: Integration von kinetischen Daten und Modellierung zur Rekonstruktion des katalytischen Zyklus des Enzyms und zur Identifizierung veränderter Mechanismen.

Computationalle Struktur- und Mechanismusmodellierung

  • Homologie und Ab Initio Strukturvorhersage: 3D-Modellierung von Mutanten, wenn experimentelle Strukturen nicht verfügbar sind.
  • Molekulare Docking- und Bindungsenergieanalyse: Vorhersage der Bindungsmodi von Substraten und Inhibitoren.
  • Molekulardynamik (MD) Simulationen: Untersuchung der konformationellen Dynamik, Flexibilität und Mutationswirkungen auf die Geometrie des aktiven Zentrums.
  • Quantenmechanik/Molekulare Mechanik (QM/MM) Berechnungen: Modellierung von Reaktionskoordinaten, Übergangszuständen und energetischen Barrieren.
  • Vergleichende mechanistische Kartierung: Identifizierung von strukturellen und energetischen Merkmalen, die verbesserte Mutanten von Wildtyp-Enzymen unterscheiden.

Integrierte Dateninterpretation

  • Korrelation von Struktur, Kinetik und Dynamik in ein einheitliches mechanistisches Modell.
  • Generierung visueller Karten, die wichtige Mutationen und funktionale Regionen hervorheben.
  • Lieferung umfassender Berichte, die die molekularen Mechanismen der Verbesserung zusammenfassen.

Service-Workflow

Workflow for structural and mechanistic analysis of random mutagenesis variants service

Dienstmerkmale

Parameter Beschreibung
Anwendbare Enzyme Alle wichtigen Enzymklassen, einschließlich Oxidoreduktasen, Hydrolasen, Transferasen und Lyasen.
Techniken Röntgenkristallographie, Kryo-EM, SAXS, CD, DSC, Kinetik, Isotopenstudien, Molekulardynamik
Rechnerische Werkzeuge GROMACS, AMBER, Gaussian, AutoDock, PyMOL, Chimera
Liefergegenstände Strukturelle Modelle, kinetische Datensätze, mechanistische Interpretation, annotierte Visualisierungen
Durchlaufzeit 6–10 Wochen, abhängig von der Strukturart und der Komplexität der Studie.
Optionale Zusatzmodule Mutantenstrukturvergleich, Substrat-Docking, Übergangszustandsmodellierung
Datenausgabeformat 3D-Koordinatendateien (PDB), kinetische Diagramme, Energieprofile, mechanistische Diagramme

Anfrage

Warum mit uns zusammenarbeiten

Ganzheitliche Integration von Struktur und Mechanismus

Wir beschränken uns nicht nur auf Struktur oder Kinetik – unsere Studien verbinden beides und schaffen eine umfassende molekulare Erklärung für das Verhalten von Mutanten.

Expertise in verschiedenen Analyseplattformen

Unser Team bringt Erfahrung in der Kristallographie, Spektroskopie und computergestützten Chemie mit, was eine robuste Interpretation aus mehreren Perspektiven gewährleistet.

Maßgeschneiderter Studienentwurf

Jedes Enzymsystem ist einzigartig. Wir passen unsere experimentelle Strategie an die spezifischen Eigenschaften, die Größe und die Cofaktoren Ihres Enzyms an.

Fortgeschrittene Computermodellierung

Wir verwenden hochgenaue Simulationen und QM/MM-Hybridberechnungen, um experimentelle Ergebnisse zu ergänzen und zu erweitern.

Aufschlussreiche mechanistische Interpretation

Neben der Berichterstattung von Daten liefern wir mechanistische Erzählungen, die erklären, warum und wie Mutationen zu funktionalen Verbesserungen führen.

Nahtlose Integration mit Upstream-Diensten

Als letzter Schritt im Workflow vereint es Mutagenese, Screening und Optimierung, um die Beziehungen zwischen Sequenz und Mechanismus zu klären.

Fallstudien und praktische Anwendungen

Fall 1: Verbesserung der Aktivität und Thermostabilität von Phthalat-Hydrolase durch zufällige Mutagenese

Eine Mutantenbibliothek der Phthalatester-Hydrolase EstJ6 wurde durch zwei Runden fehleranfälliger PCR erzeugt, was zur Identifizierung der Mutante ET2.2 mit deutlich verbesserter Aktivität, Thermostabilität und Lösungsmittelverträglichkeit führte. ET2.2 wies drei Substitutionen (Thr91Met, Ala67Val und Val249Ile) auf, was zu einer 2,8-fachen Steigerung der katalytischen Aktivität, einer 2,3-fachen höheren Expression und einer über 50% verbesserten Stabilität bei 50°C führte. Kinetische und Docking-Analysen zeigten, dass eine verkürzte Wasserstoffbrücke zwischen Ser146-OH und der Substratcarbonylgruppe die katalytische Effizienz steigerte, während eine erhöhte Hydrophobizität der Tasche die Methanoltoleranz verbesserte. Diese Ergebnisse zeigen, dass zufällige Mutagenese die Enzymleistung für industrielle Anwendungen effektiv verbessert.

Enzymatic characterization of phthalate ester hydrolase EstJ6 wild type and mutants under solvents, metal ions, surfactants, and varied substratesAbbildung 1. Enzymatische Charakterisierung von WT und Mutanten. (A) Einfluss von organischen Lösungsmitteln auf die Aktivität von WT und Mutanten; (B) Einfluss von Metallionen auf die Aktivität von WT und Mutanten; (C) Einfluss von Tensiden auf die Aktivität von WT und Mutanten; (D) Substratspezifität von WT und Mutanten. Hinweis: A–C verwendeten DBP als Substrat. (Qiu u. a.., 2021)

Fall 2: Entwicklung einer methanolstabilen Lipase zur Biodieselproduktion

Enzymatische Katalyse in organischen Lösungsmitteln bietet enormes industrielles Potenzial, wird jedoch häufig durch eine geringe Enzymstabilität eingeschränkt. In dieser Studie wurde eine Lipase aus Geobacillus stearothermophilus T6 wurde für eine verbesserte Methanoltoleranz durch zufällige Mutagenese und strukturgeleitete Konsensdesign entwickelt. Beide Strategien führten zu Varianten mit dramatisch erhöhten Halbwertszeiten in 70% Methanol. Der beste zufällige Mutant, Q185L, zeigte eine 23-fache Stabilitätsverbesserung, während die Konsensvariante H86Y/A269T eine 66-fache höhere Stabilität, verbesserte Thermostabilität und eine verdoppelte Biodiesel-Ausbeute aufwies. Strukturelle Modellierung ergab, dass diese Mutationen die Schließung des Deckels und die Bildung von Wasserstoffbrücken förderten, was insgesamt die Robustheit des Enzyms für die industrielle Biokatalyse erhöhte.

Stability of lipase T6 and its variants in increasing methanol and ethanol concentrationsAbbildung 2. Spezifische Aktivität der gereinigten Lipase T6 und der Varianten A269T, Q185L, Q185L/A269T und H86Y/A269T nach Inkubation in Methanol (A) und Ethanol (B) Lösungen. (Dror u. a.., 2014)

Häufig gestellte Fragen

  • Muss ich gereinigte Enzymproben bereitstellen?

    A: Nicht unbedingt. Wir können die Expression und Reinigung als Teil des Services durchführen, wenn nötig.
  • Q: Können Sie Kristallstrukturen für jedes Enzym bestimmen?

    A: Die meisten Enzyme sind geeignet, obwohl die Kristallisationsfähigkeit von Größe und Flexibilität abhängt. Wenn die Kristallisation schwierig ist, bieten wir Alternativen wie Kryo-EM oder computergestützte Modellierung an.
  • Q: Wie detailliert sind Ihre mechanistischen Berichte?

    A: Unsere Berichte enthalten strukturelle Abbildungen, kinetische Diagramme, molekulare Modelle und interpretierende Kommentare, die Mutationen mit der Funktion verknüpfen.
  • Q: Was ist, wenn experimentelle Daten unvollständig oder nicht verfügbar sind?

    A: Wir können hybrides Modellieren durchführen, indem wir teilweise experimentelle Daten mit computergestützten Simulationen kombinieren, um ein vollständiges mechanistisches Bild zu erstellen.
  • Q: Können Sie die Strukturen von Mutanten und Wildtyp vergleichen?

    A: Ja. Die vergleichende Analyse ist zentral für unseren Arbeitsablauf, da sie wichtige konformationale Unterschiede und deren funktionale Implikationen identifiziert.
  • Q: Analysieren Sie Enzym-Substrat- oder Enzym-Inhibitor-Komplexe?

    A: Absolut. Wir führen Docking- und Ko-Kristallisationsstudien durch, um Bindungsinteraktionen und katalytische Geometrie zu visualisieren.
  • Q: Sind mechanistische Studien auf multi-untereinheitliche Enzyme anwendbar?

    A: Ja. Wir analysieren routinemäßig homo- und hetero-oligomere Enzyme und bewerten interfaciale Mutationen sowie allosterische Kommunikation.
  • F: Wie integrieren sich rechnergestützte und experimentelle Ergebnisse?

    A: Experimentelle Daten validieren und beschränken die Modellierung, während Simulationen experimentelle Ergebnisse interpretieren und erweitern – und so ein konsistentes mechanistisches Verständnis gewährleisten.
  • A: In welchen Formaten stellen Sie strukturelle Daten zur Verfügung?

    Wir liefern Koordinatendateien (PDB), molekulare Visualisierungssitzungen und annotierte Abbildungen für die Veröffentlichung oder den internen Gebrauch.
  • F: Werden meine Daten vertraulich behandelt?

    A: Ja. Alle Projektdaten, -strukturen und -ergebnisse sind unter strengen Vertraulichkeits- und Geheimhaltungsprotokollen gesichert.

Referenzen:

  1. Dror A, Shemesh E, Dayan N, Fishman A. Protein-Engineering durch zufällige Mutagenese und strukturgeführte Konsensbildung von Geobacillus stearothermophilus Lipase T6 für verbesserte Stabilität in Methanol. Appl Environ Mikrobiol. 2014;80(4):1515-1527. doi:10.1128/AEM.03371-13
  2. Qiu J, Yang H, Shao Y, u. a.Verbesserung der Aktivität und thermischen Stabilität einer Phthalat-abbaubenden Hydrolase durch zufällige Mutagenese. Ökotoxikologie und Umweltsicherheit. 2021;209:111795. doi:10.1016/j.ecoenv.2020.111795

Nur für Forschungs- und Industriezwecke. Nicht für den persönlichen Gebrauch bestimmt. Bestimmte Produkte in Lebensmittelqualität eignen sich für die Formulierungsentwicklung in Lebensmitteln und verwandten Anwendungen.

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